动物实验报告.doc

实验动物学实验报告
学 院：
学 号：
姓 名
时 间：
精品文库
实验一：小鼠实验
一、实验目的
1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；
2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；
3、掌握小鼠的标记方法；
4、掌握小鼠的基本采血技术；
5、掌握小鼠的常用给药方法；
6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；
二、实验材料
1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠；
2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖
刀； 1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液； 2% 水合***醛；
三、实验内容及方法
1、小鼠的抓取和固定
抓取时先用右手抓取鼠尾提起， 置于鼠笼或实验台向后拉， 在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤， 将鼠体置于左手心中， 把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验
动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
2、小鼠的雌雄鉴别
雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见***开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外***与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和***之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和***之间长毛。
3、小鼠的标记方法
1）耳孔法
用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口， 左耳为十位，右耳为个位。
2）剪趾法
适用于出生一周以内新生仔鼠；
3）染色法
欢迎下载 2
精品文库
用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血
1）剪尾采血
当所需血量很少时采用本法。 固定动物并历出鼠尾， 将鼠尾在 45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去 1-2mm ，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取
血后，先用棉球压迫止血并立即用 6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜， 保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血， 三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取 ～ 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好， 可以较长的间隔时间连续取血， 进行血常规检查。
2）眼眶后静脉丛取血
当需中等量的血液， 而又需避免动物死亡时采用此法。 用左手固定鼠， 尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧， 引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血） ，右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。 刺入深度小鼠 2～3mm 。当感到有阻力时再稍后退， 保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系， 血液即流人玻璃管中。 得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血 ～ 。
3）心脏取血
动物仰卧固定在固定板上， 剪去心前区部位的被毛， 用碘酒酒精消毒皮肤。 在
欢迎下载 3
精品文库
左侧第 3～ 4 肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有 4～ 5 号针头的注射器，
选择心搏最强处穿刺， 当针刺入心脏时， 血液由于心脏跳动的力量自动进人注射
器。此法要求实验者掌握以下要点：要迅速而直接插入心脏，否则，心脏将从针
尖处滑脱；如第一次没刺准，将针头抽出重刺，不要在心脏周围乱探，以免损伤
心、肺；要缓慢而稳定的抽吸，否则，太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留
动物生命时，也可麻醉后切开动物胸部，将注射器直接刺人心脏抽吸血液。
5、小鼠的常用给药方法
1）经口给药：小鼠灌胃
左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持灌胃针，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。动物应固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时， 应立即停止进针或将针拔出， 以兔损伤或穿破食道以及误入气管。一般当灌胃针插入小鼠 3~4cm ，常用的灌胃量小鼠为 ~1ml ；2）皮下注射给药
皮下注射给药部位以颈部三角区最佳。操作时，常规消毒注射部位皮肤，然
后将皮