复旦大学实验动物学实验报告样稿.docx

复旦大学试验动物学试验汇报
试验汇报一
小鼠通常技术操作
一、试验目标和要求：
经过实际操作，掌握小鼠试验通常操作方法，包含动物抓取和保定、性别判定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。
二、试验基础步骤：
（一）抓取和保定
先用右手将小鼠尾巴提起，至于鼠笼或粗糙平面上，当小鼠向前挣扎行进时，再用左手拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤，翻转小鼠至于掌心，拉直后肢。以小指拉住小鼠尾巴即可。在部分特殊试验中，如进行尾静脉注射时，可使用专门小鼠固定器进行保定。
（二）性别判定
将小鼠抓取后，观察其肛门及***之间距离，距离远为雄性，距离近为雌性。另外翻转小鼠观察***周围，性成熟雄性小鼠睾丸降至阴囊内，会有显著突起；雌性小鼠肛门至会阴处有一条无毛覆盖细线。
（三）编号方法
常见有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。另外还有断趾法、剪尾法、被毛
剪号法、笼子编号法等。
在此次试验中，我们小组使用是染色法。
（四）去毛方法
常见有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。
（五）给药方法
常见有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。
经口给药法
（1）灌胃法：左手固定小鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从小鼠一侧犬齿缺失处插入口中，灌胃针竖起靠向口腔后壁，使小鼠消化道成直线，沿咽喉壁缓慢插入食管，使其前段抵达膈肌位置，灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食管或误入气管。
（2）口服法
在此次试验中，我们小组使用是灌胃法。

（1）皮下注射
（2）肌肉注射
（3）腹腔注射
（4）静脉注射
在此次试验中，我们使用是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。
（六）采血方法





在此次试验中，我们小组使用是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。
（七）麻醉方法
：普鲁卡因、利多卡因
：***、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。
在此次试验中，对小鼠采取腹腔注射麻醉，方法和腹腔注射给药一样，麻醉剂是2%水合***醛，剂量为400mg/kg，。
（八）皮肤移植
在此次试验中，在小鼠尾巴上切取长8mm，宽3mm皮肤，切取效果不好。
（九）处死方法





在此次试验中，我们小组采取是颈椎脱臼法。
（十）解剖方法
解剖步骤以下：动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔次序观察各脏器位置、形状及相互相互关系，然后分别取下。先在胸腔入口处切断食管和气管，将心和肺一起取出；再依次摘除腹部脏器脾、肝、肾上腺、肾、胃、肠和盆腔器官，分别进行各脏器检验。
在此次试验中，我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。在观察各个脏器以后，着重又观察了胸腺（在胸腔入口处，乳白色，由左右2叶组成）、胰腺（分散在十二指肠、胃底和脾门处，色淡红，不规则，似脂肪组织）、肾上腺（在肾脏上级，白色，周围有较多脂肪组织包绕）、雌性小鼠子宫（呈“Y”型，为双角子宫，分为子宫角、子宫体、子宫颈）、卵巢（在双侧肾脏下缘周围，粉红色，为系膜包绕，不和子宫想通）、雄性小鼠睾丸（椭圆形白色物质）、凝固腺（附着于精液腺内侧，呈半透明半月形器官）。
试验汇报二
兔通常操作技术
目标和要求
经过实际操作，基础掌握兔抓取和保定、性别判定、灌胃、耳缘静脉采血注射、解剖、
处死等操作技术。
试验基础步骤：
抓取和保定
：轻轻打开笼门，勿使兔受惊，当兔平静下来时，用手伸入笼内，从头前部阻。它跑动，用右手把两耳轻轻压于手心内，抓住颈背部皮肤提起兔，然后用左手托住臀部，兔身重量大部分落在左手掌上。
：将兔置于试验台上，待兔平静后。双手各抓一侧兔前肢，肘部夹住兔后肢后向胸腹部靠拢，展开兔前肢，暴露兔雄部。
（二）性别判定
使兔下腹部朝向观察者，将***周围皮肤拨开，可见一圆孔，里面暴露出***，则为雄性，反之为雌性。
（三） 给药方法


在此次试验中，我们小组采取是灌胃给药法，因为没有固定器和开口器，灌胃给药由三人完成：第一人固定兔，将兔放于桌面，双手抓住兔两前肢，前臂和兔身平行，用肘部夹住兔身体；第二人用止血钳
从兔嘴一侧插入兔嘴中，并压住舌头，将嘴撑开；第三人取