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土壤微生物量碳测定方法及应用
土壤微生物量碳（Soil microbial biomass ）不仅对土壤有机质和养分的循环起着主要
作用，同时是一个重要活性养分库，直接调控着土壤养分（如氮、磷和硫等）的保持和释放
及其植物有效性。近4积（5ml）
V2 ——滴到终点时消耗硫酸亚铁溶液体积（ml）
（6）去乙醇氯仿制备：在通风橱中，将分析纯氯仿与蒸储水按1: 2 （V:V）加入分液漏斗中，
充分摇动1 分钟，慢慢放出底层氯仿于烧杯中。如此洗3 次。得到的纯氯仿用无水氯化钙出
去氯仿中的水分，于试剂瓶中在低温（4℃）黑暗状态可保存几周（Williamss 等，1995）
三、仪器设备：
Phoenix8000碳-自动分析仪，50ml可调移液器，往复式振荡器（300 rev - min-1）, 50ml
烧杯， 50ml 聚乙烯瓶，125 ml 聚乙烯瓶，150ml 消化管（24*295mm） ， 250ml 三角瓶，50ml
酸式滴定管。土壤筛（孔径2mmi, 22cm真空干燥器，水泵抽真空装置，pH-自动滴定仪。
四、操作方法：
土样前处理：
新鲜土壤应立即处理或保存于4℃冰箱中，测定前仔细除去土样中可见植物残体（如根、
茎和叶 ）及土壤动物（蚯蚓等），过筛（孔径2mm） ，彻底混匀。处理过程应尽量避免破坏土
壤结构， 土壤含水量过高应在室内适当风干，以手感湿润疏松但不结块为宜（约为饱和持水
量的40%） 。土壤湿度不够可以用蒸馏水调节至饱和持水量的40%。次样品即可用于土壤实时
测定。开展其他研究（如培养试验）可将土壤置于密闭的大塑料桶内培养7-15 天，桶内应有
适量水以保持湿度，内放一小杯1 mol • L-1NaOH容液吸收土壤呼吸产生的 CO,培养温度为
25℃ . 经过前培养的土壤应立即分析。如果需要保留，应放置于4℃的冷藏箱中，下次使用前
需要在上述条件下至少培养24 小时。 这些过程为消除土壤水分限制对微生物的影响，及植物
残体组织对测定的干扰。
土壤饱和持水量测定可按Shaw（ 1958）的方法：在圆形漏斗茎上装一带夹子的橡皮管，
漏斗内塞上玻璃纤维塞，取50g 土壤于漏斗中，夹紧橡皮塞，加入50ml 水保持 30 分钟，然
后打开夹子并测定30 分钟内滴下的水的体积，加入的水量减以滴下的水量再加原来土壤中含
的水量即为该土壤的饱和含水量。
土壤熏蒸
称取经前处理的新鲜土壤（含水量为饱和持水量的40%） 3 份（烘干基重）土样于50ml
烧杯中， 用去乙醇氯仿熏蒸，方法是将其置于底部有少量水（约200ml） 和去乙醇氯仿（ 40ml）
的真空干燥器中，氯仿加入烧杯中，并在其中放入经浓硫酸处理的碎瓷片（大小，防爆）。在
真空度下使氯仿剧烈沸腾3-5 分钟后，关闭真空干燥器阀门，移置在25℃黑暗条件下熏蒸土
壤 24 小时；然后将土壤转入另一干净真空干燥器中，反复抽真空（）6 次，每次3 分钟，彻
底出去土壤中氯仿（残留在土壤中的氯仿对提取碳的测定有较大的影响） 。
在熏蒸同时，另取3 份 （ 烘干基重 ） 土壤于 125ml 提取瓶中（为不熏蒸对照） 。由于熏蒸过
程需要 24 小时，因此通常在熏蒸时，将不熏蒸土壤可置于4℃条件下保存。
土壤提取
将除去氯仿后的熏