动物实验报告.doc

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实验动物学实验报告
皮下注射给药部位以颈部三角区最正确。操作时，常例消毒注射部位皮肤，然
后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摇动，易摇动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可迟缓地将药物注入皮下。拔针时左手拇、食指捏住进针部位片晌，以防备药物外漏。
3）肌肉注射给药
小鼠体积小，肌肉少，极少采纳肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于
油或其余溶剂中的药物时，采纳肌肉注射。操作时1人保定小鼠，另一人用左手抓住小鼠的1条后肢，右手拿注射器。将注射器与半腱肌呈90°角快速插入1/4,。
4）腹腔注射给药
左左手提起并固定小鼠，使鼠腹部向上，鼠头略低于尾部，右手持注射器将
针头在下腹部凑近腹白线的两恻进行穿刺，针头刺入皮肤后进针3nm左右，接着使注射针头与皮肤呈45°角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵挡感消逝。固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。
5）尾静脉注射给药
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鼠尾静脉有两根，左右双侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧
杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦抹使血管扩
张，并可使表皮角质融化，以左手拇指和食指捏住鼠尾双侧，使静脉充盈，用中
指从下边托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器，使针头与
静脉平行（小于30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖2-3厘米）处进针，此处
皮薄易于刺入，先缓注少许药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可连续注入。
注射完成后把尾部向注射侧波折以止血。如需频频注射，应尽可能从尾端开始，
此后向尾根部方向挪动注射。动进入注射器。
6、小鼠的解剖
将小鼠放在解剖盘上，用大头针将四肢固定在解剖盘上。用酒精棉球将小鼠腹部的皮肤消毒。用手术剪沿腹中线将小鼠的腹部和胸部的皮肤剪开，此后用手术剪将腹腔和胸腔剪开，认真察看小鼠腹腔和胸腔的各内脏器官。
内部脏器察看
1）肺：分左右两叶，右肺分为四叶，左肺为一整叶。
2）心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，心尖位于第四肋间。
3）肝：附于隔上，呈暗褐色，分5叶。
4）胃：分贲门、幽门、胃底及胃体。
5）肠：分小肠和大肠。小肠包含回肠、空肠和十二指肠。
6）脾：脾斜卧在胃的左边，呈暗红色，长条扁平状。
7）胰：在十二指肠周边，呈粉红色。
8）肾：右肾比左肾地点稍高，肾脏前面有肾上腺，每肾内侧各有一根输尿管，
张口于膀胱背侧。
9）卵巢和子宫：卵巢形似绿豆状，粉红色，左右各一，位于肾脏下方。小鼠为
双角子宫，为Y字形。
10）睾丸：小鼠睾丸有一对，幼年时睾丸位于腹腔内，性成熟后则降落至阴囊
内。
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实验二：大鼠实验
一、实验目的
1、掌握大鼠抓取、固定的基本方法；
2、掌握大鼠的雌雄鉴识方法；
3、掌握大鼠的标志方法；
4、掌握大鼠的基本采血技术（尾静脉采血、心脏釆血、腹主动脉采血）；
5、掌握大鼠的常用给药方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射、皮下注射、皮内
注射、麻醉）；
6、掌握大鼠的解剖方法，熟****内部脏器的自然地点；
二、实验资料
1、实验动物：每组SD大鼠2只（1雌1雄）；
2、实验器材及试剂：鼠笼、大鼠固定器、大鼠固定板、1ml注射器、5ml注射
器、眼科剪、弯头镊、灌胃针、10%水合***醛、生理盐水；
三、实验内容及步骤
抓取和固定
右手从鼠笼将大鼠尾巴上段抓住并提起，放在鼠笼上部。轻轻向后拉鼠尾，
大鼠向前摆脱时，用左手拇指和食指抓住两耳后和劲部大多数皮肤。其余手指及
掌心夹住背部和尾部，将大鼠尾巴钩绕于小指上，将尾巴固定。注意不要使劲过
大使大鼠窒息死亡。
性别判断
成年雄鼠的睾丸沉降至阴囊中，故其阴囊显然，成年雌鼠可见***张口和乳头，幼鼠或仔鼠则主要从外***与肛门的距离判断，雄性：距离长，毛发密（和其余部位同样），雌性：距离短，毛发罕见。